70. Melyek az óvintézkedések a maradék klór meghatározására?
A klór nagyon instabil vizes oldatban, különösen alacsony koncentráció esetén, és a tartalom gyorsan csökken. A klór csökkentési sebességét felgyorsítják, ha napfénynek és más erős fénynek vagy izgatottnak teszik ki. Ezért a mintát a mintavétel után nem lehet tárolni, és a klór meghatározását azonnal el kell indítani, elkerülve a fény expozícióját és a vízmintát.
A meghatározási folyamat során az összes műveletnek el kell kerülnie a közvetlen napfény expozíciót, és a legjobb, ha a lehető legalacsonyabb hőmérsékleten és a lágy fényben végzik. Ezenkívül az összes kolorimetrikus módszerhez szín- és zavarossági üres ürülékeket igényel a nyersvíz színének és kromatikusságának kompenzálásához, különösen akkor, ha a zavarosság és a kromatikusság magas, az üres értéket meg kell határozni.
Az O-tolidin vizuális kolorimetrikus módszer használatakor a maradék klór meghatározására, ha a vízmintát egyenletesen keverik a standard O-tolidin oldattal, majd a kolorimetrikus módszert azonnal elvégezzük, akkor a mért eredmény a szabad maradék klór. Ha a vízmintát 10 percig sötét helyre helyezik, hogy a kolorimetrikus módszer elvégzése előtt a legmagasabb kromatikusságot hozzák létre, az eredmény a teljes maradék klór. A teljes maradék klór mínusz a szabad maradék klór a kombinált maradék klór.
Az o-tolidin vizuális kolorimetrikus módszer használatakor annak meghatározására, hogy a maradék klór nagy-e, narancssárga színű lesz; Ha a vízminta lúgossága túl magas, és a maradék klór kicsi, világos zöld vagy világoskék színű lesz. Ebben az időben 1 ml O-tolidin standard oldat hozzáadható a normál világos sárga szín előállításához.
71. Milyen különbségek vannak a biofilm módszer biológiai fázisa és az aktivált iszap között?
A biofilm -kezelési rendszer biológiai fázisjellemzői különböznek az aktivált iszapfolyamat tulajdonságaitól, elsősorban a mikrobiális fajok és az eloszlás szempontjából.
Általánosságban elmondható, hogy a vízminőség fokozatos változása és a mikrobiális növekedés környezeti feltételeinek javulása miatt a biofilmrendszerben a mikroorganizmusok típusai és mennyisége több, mint az aktivált iszapfolyamatban, és az élelmiszerlánc hosszú és összetettebb, különös tekintettel a filamentum bacter és a metazoánok számának növekedésére, és ott van egyre egyre bonyolultabb. Az algák megjelenhetnek a napfénynek kitett területeken, és a rovarok, például a szűrő legyek is megjelenhetnek. Az eloszlási jellemzők az, hogy a biofilm vastagsága (a felületről a belsőre) vagy a befolyó irányának (eltérő érintkezési idő a befolyással) mentén, a mikroorganizmusok típusai és mennyiségei nagy különbségeket mutatnak. A többlépcsős kezelés első szakaszában vagy a lefelé irányuló áramlási töltő réteg felső részében a biofilmet gyakran flokkulens baktériumok dominálják, és a film vastagsága szintén viszonylag nagy (2-3 mm); A szakaszok számának növekedésével vagy a lefelé irányuló áramlás töltő rétegének alsó részével, mivel az IT -vel érintkezett vízminőséget részben kezelték, a rostélyosabb baktériumok, a protozoa és a metazoa fokozatosan megjelennek a biofilmben; A mikroorganizmusok típusai növekednek, de a biofilm vastagsága folyamatosan csökken (1-2 mm). A biofilm felszínén lévő mikroorganizmusok mind aerobok, és a vastagság növekedésével a mikroorganizmusok fokozatosan fakultatívvá vagy akár anaerobvá válnak.
A biofilmet a szűrőanyagra vagy a töltőanyagra rögzítik, és a biológiai szilárd retenciós idő SRT (iszapkor) hosszú, így hosszú generációs idővel és nagyon alacsony proliferációs sebességgel, például nitrifikáló baktériumokkal növekszik a mikroorganizmusok. Számos rostos baktérium is megjelenhet a biofilmen, de az iszapokkal nem fordul elő. Az aktivált iszap módszerrel összehasonlítva az állati táplálkozás aránya a biofilmen lévő organizmusokban nagyobb, a mikro-állatok túlélési aránya szintén magasabb, és magas tápanyag-szintű organizmusokon élhet. Oligochaetes és rovarok a ragadozó ciliátok, rotiferek és fonálférgek felett élnek. Ezért a biofilm élelmiszerlánca hosszabb, mint az aktivált iszap élelmiszerlánca, ezért a biofilm módszerrel előállított iszap mennyisége kevesebb, mint az aktivált iszap módszeré.
Az egyes szinteken vagy a töltőanyagok minden szintjén lévő jellegzetes mikroorganizmusok a különféle szennyvízminőség miatt eltérőek lesznek, azaz a vízminőség változásai a biofilmben a mikroorganizmusok típusában és számában változnak. Amikor a behatoló koncentráció növekszik, megfigyelhető, hogy az eredeti szint jellegzetes mikroorganizmusai lefelé mozognak, vagyis az eredetileg az első szinten vagy a töltőanyag felső rétegén lévő mikroorganizmusok megjelenhetnek a hátsó szinten vagy az alsó töltőanyagrétegen. Ezért hasonló változások figyelhetők meg a biológiai fázismegfigyelés révén, hogy következtetjenek a szennyvízkoncentráció vagy az iszapterhelés változásaira.
72. Mit jelent a vízben a teljes baktériumszám -mutató?
A teljes baktériumszám az 1 ml vízmintában termesztett kolóniák számára utal tápanyag -agar tápközegben, miután 37 ° C -on 24 órán át tenyésztett. A mérési egység általában az egyes ML vízben található baktériumok száma. A vízben lévő baktériumok teljes száma gyakran kapcsolódik a víztest szerves szennyezésének mértékéhez, és ez az egyik fontos mutatója a vízszennyezés mértékének és az emberi testnek lehetséges károsodásának értékeléséhez.
A baktériumok teljes számának elemzési módszere a standard lemez módszert használja a vízmintában lévő baktériumok számolására, amely egy módszer az aerob és fakultatív anaerob heterotróf baktériumok sűrűségének meghatározására. Mivel azonban a vízmintában lévő összes baktérium fiziológiai követelményeinek nem felelnek meg a tápanyag -bázis vagy semmilyen környezeti állapot, és a vízben lévő baktériumok léteznek egyéni, párok, láncok, klaszterek vagy klaszterek formájában, a mért kolónia száma valójában alacsonyabb, mint a ténylegesen fennmaradó baktériumok száma, amely ténylegesen fennmarad a vizsgált vízmintában.
73. Melyek az óvintézkedések a baktériumok teljes számának meghatározására?
Használja az aszeptikus működési módszert, hogy felszívja az 1 ml vízmintát vagy 2-3 hígított vízmintát megfelelő hígító szorzóval, injektálja őket a sterilizált lemezbe, majd öntsön 15 ml tápanyag -agar tápközeget, és alaposan keverje össze a vízmintával, és készítsen két párhuzamos mintát, és kiegészítés közben, egy üres kontroll csak tápanyag -agar tápközeggel, amelyet minden egyes tesztben be kell dobni.
A kultúra után a lemez kolóniát azonnal meg kell végezni. Ha a számot el kell halasztani, akkor a lemezt 5-10 ° C-os környezetben lehet tárolni, de nem több, mint 24 órán keresztül, és ezt a gyakorlatot nem szabad rutinszerű működési módszerként használni.
A tányér kolóniák számolásakor szabad szemmel megfigyelheti. A mulasztások elkerülése érdekében nagyítóval ellenőrizze, ha szükséges. Azoknak a kolóniáknak, amelyek hasonlónak néznek ki és közel állnak egymáshoz, de nem érintik, mindaddig, amíg a távolság kisebb, mint a legkisebb kolónia átmérője, külön -külön kell számolni. Azokat a kolóniákat, amelyek szoros érintkezésben vannak, de eltérő megjelenésűek (morfológia vagy szín), szintén külön kell számolni.
Az ugyanazon hígítás átlagos kolóniaszámának kiszámításakor, ha az egyik lemez nagy pehelykolóniával növekszik, akkor azt nem szabad használni, és a pehelykolóniák nélküli lemezt kell használni a hígítás kolóniaszámaként. Ha a pelyhes kolóniák a lemez kevesebb mint fele, és a fennmaradó kolóniák eloszlása nagyon egyenletes, akkor az egységes növekedéssel rendelkező tányér 1/2 -es kolóniaszámlája megsokszorozható 2 -vel, hogy ábrázolja az egész tányér kolóniaszámát.
A teljes baktériumszám eredménye az egyes lemezeken lévő kolóniák teljes száma, vagy az azonos hígítás párhuzamos kísérleti tányérainál az átlagos kolóniák száma szorozva a hígítási szorzattal. Ha a végeredmény 100 -on belül van, az eredményt a kolóniák tényleges száma szerint rögzítik; Ha a 100 -nál nagyobb, akkor két szignifikáns számot használunk és 10 -es exponenseként fejeznek ki. Ha a kolóniák számát nem lehet megszámolni, akkor az eredmény bejelentésekor a hígítási szorzót meg kell jegyezni.
74.
A baktériumok teljes számának teszteredményeinek kiszámításakor összehasonlítani és kiszámítani kell a kolóniák átlagos száma alapján, különböző hígításokon. A módszer a következő:
⑴ Először válassza ki azt az esetet, amikor a kolóniák átlagos száma 30 és 300 között van a számításhoz. Ha a kolóniák átlagos száma csak egy hígításnál megfelel ennek a tartománynak, akkor a kolóniák átlagos számát szorozva a hígítással szorozva, a vízmintában lévő baktériumok számának eredményeként.
⑵ Ha a kolóniák átlagos száma két hígításnál 30 és 300 között van, akkor a számítási módszert a kettő arányának megfelelően kell meghatározni. Ha az arány kevesebb, mint 2, akkor az átlagos kolóniaszám átlagát megszorozzuk a hígítási szorzattal, a vízminta teljes baktériumszámának eredményeként; Ha az arány nagyobb, mint 2, akkor az átlagos kolónia számának kisebb száma szorozva a hígítási szorzattal, a vízminta teljes baktériumszámának eredményeként.
⑶ Ha az összes hígítás átlagos kolóniaszáma meghaladja a 300 -at, akkor a legnagyobb hígítás átlagos kolóniaszámát a hígító szorzattal szorozva kell használni, a vízminta teljes baktériumszámának eredményeként.
⑷ Ha az összes hígítás átlagos kolóniaszáma kevesebb, mint 30, akkor a legkisebb hígítás átlagos kolóniaszámát szorozva a hígítási szorzattal szorozva, a vízminta teljes baktériumszámának eredményeként.
⑸ Ha az összes hígítás átlagos kolóniaszáma nem 30 és 300 között van, akkor a 30 vagy 300 -hoz legközelebb eső átlagos kolóniaszámot szorozva a hígító szorzattal kell használni a vízminta teljes baktériumszámának eredményeként.
75. Mit jelent a koliformszám (érték)?
A koliform baktériumok aerob vagy fakultatív anaerob, laktóz erjesztési, gram-negatív, spóramentes rudak osztályára utalnak, tehát néha széklet koliformáknak vagy Escherichia coli-nak is nevezik. A koliform baktériumok savat és gázt termelhetnek, miután laktóz tápközegben tenyésztették 37 ° C -on 24 órán át. A koliform baktériumok számát (értékét) általában az 1L vagy 100 ml vízben található koliform baktériumok számában mérik.
Ha a vízforrást a széklet szennyezi, akkor a bélkórokozók szennyeződhetnek és bélfertőző betegségeket okozhatnak. Mivel a bélkórokozók a mikroorganizmusok számának viszonylag kis részét teszik ki, gyakran nagyon nehéz elválasztani a kórokozókat a víztől, különösen a csapvíztől. A koliform baktériumok a leggyakoribb és legnagyobb típusú baktériumok a bél aerob baktériumok körében, ezért gyakran alkalmazzák a székletszennyezés indikátor baktériumaiként. Vagyis a vízben lévő koliform baktériumok számát arra használják, hogy megítéljék, hogy a vízforrást a széklet szennyezi -e, és arra a következtetésre juthatunk, hogy a vízforrást a bélkórokozók szennyezik.
76. Milyen módszerek vannak a koliform baktériumok számának meghatározására?
Két általánosan használt módszer létezik a teljes koliform baktériumok meghatározására: többcsöves fermentációs módszer és a membránszűrő módszer.
A többcsöves fermentációs módszer a koliform baktériumok, például a laktóz-fermentáció, a gram-negatív festés, a spórák és a rúd alakú jellemzőin alapul. Három lépéssel tesztelik a koliform baktériumok teljes számának meghatározására a vízmintában. A többcsöves fermentációs módszer a legvalószínűbb számot használja a kísérleti eredmények kifejezésére, más néven MPN. Valójában ez egy módszer a statisztikai elmélet alapján az E. coli sűrűségének és egészségügyi minőségének becslésére. Ez a becslés általában nagyobb, mint a tényleges szám. A koliformszám becsült értékét az a hígítás határozza meg, amely mind a pozitív, mind a negatív eredményeket mutatja. A vízminták vizsgálatához szükséges ismétlések számának megtervezésekor a szükséges adatok pontosságán kell alapulnia.
A membránszűrő módszer egy speciális sterilizált mikropórusos membránt használ a vízminta szűrésére. Miután a baktériumok csapdába esnek a membránon, a membrán a tenyészet fuksin -nátrium -szulfit tápközegéhez kapcsolódik. Mivel a koliform baktériumok fermentálhatják a laktózt, a lila-piros kolóniák fémes csillogásban jelennek meg a szűrőmembránon történő tenyésztés után. A szűrőmembrán ezen jellemzőjével rendelkező kolóniák számának megszámolásával kiszámítható a vízminták minden literben található koliform baktériumok száma. A szűrőmembrán módszer nagyobb mennyiségű vízmintát képes megmérni, és gyorsabban érheti el az eredményeket, mint a többcsöves fermentációs módszer, de a hatás rossz, ha a zavarosság magas és a nem E sűrűségét. A coli baktériumok magas.
77. Mi a maradék klór?
A maradék klór a vízben maradt klór, miután a vizet egy bizonyos ideig fertőtlenítik a klórral. Annak funkciója, hogy fenntartsa a folyamatos baktericid képességeket. A víz belépésétől kezdve a csőhálózatba a vízpontig, a vízben a fertőtlenítőszer hatását meg kell tartani a lehetséges kórokozói károsodás és az újbóli növekedés megakadályozása érdekében. Ehhez megköveteli, hogy a vízhez hozzáadott fertőtlenítőszer mennyiségének ne csak a vízben történő kórokozók megölésének igényeinek kell megfelelnie, hanem megőriznie kell a kórokozók újbóli növekedését a vízszállítás során. Ha klór fertőtlenítést alkalmaznak, akkor a fertőtlenítőszer azon része, amely meghaladja a fertőtlenítési igényeket, a maradék klór.
A maradék klórnak két formája van: szabad maradék klór (CL2, HOCL és OCL-) és kombinált maradék klór (NH2CL, NHCL2 és NCL3). Ez a két forma ugyanabban a vízmintában egyszerre létezhet, és a kettő összegét teljes maradék klórnak nevezzük. A szabad maradék klór erős baktérium -képességgel rendelkezik, de könnyen bomlik. A kombinált maradék klór gyenge baktérium -képességgel rendelkezik, de a vízben hosszabb ideig tart. Általában, ha nincs ammónia vagy ammónium a vízben, a maradék klór szabadon marad a maradék klór, míg ammónia vagy ammónium van a vízben, a maradék klór általában csak kombinált maradék klórot, néha maradék klórot és kombinált maradék klór együttélést tartalmaz. A maradék klór mennyiségének megfelelőnek kell lennie. A túl alacsony nem fog szerepet játszani a kórokozók megelőzésében és kezelésében. A túl magas nemcsak növeli a fertőtlenítés költségeit, hanem az emberi testtel való érintkezés esetén is károsíthatja az emberi testet.
Fogalmi szempontból a maradék klór a klórgáz- és klór sorozatú fertőtlenítőszerekre utal. Más nem klór-fertőtlenítőszerek, például klór-dioxid használata esetén a maradék klórot úgy kell érteni, mint a fennmaradó fertőtlenítőszert a vízben hagyva egy bizonyos érintkezési idő után.
78. Milyen módszerek vannak a maradék klór meghatározására? Melyek a megfelelő alkalmazandó hatókörük?
A maradék klór meghatározását jód-titrálással, o-tolidin vizuális kolorimetriával, N, N-dietil-p-fenilén-diamin (DPD) vas titrálással (GB 11897-89), N, N-dietil-p-fenilén-diamin spektrofotometria (GB 11898-89) stb., Stb. maradék klór a vízmintában; Az O-tolidin vizuális kolorimetriás módszer a működési eljárás megváltoztatásával meghatározhatja a teljes maradék klór és a szabad maradék klór; Az N, N-dietil-p-fenilén-diamin titrálási módszer vagy spektrofotometria módszer meghatározhatja a szabad klór vagy teljes klór 0,03-5 mg/L koncentrációs tartományban, valamint a működési eljárás, a monokloramin, a diklór-amin és néhány kombinált klórkomponens megváltoztatásával is meghatározható.
A jód -titrálási módszer alkalmas vízmintákra, amelyek teljes maradék klór -tartalma nagyobb, mint 1 mg/L, és általában alkalmazott módszer a hozzáadott klór mennyiségének meghatározására. Az O-tolidin vizuális kolorimetrikus módszer egyszerűen működik, és ez egy általános módszer az ivóvízben lévő maradék klór meghatározására. A mérési tartomány 0,01-10 mg/L. Az N, N-dietil-p-fenilén-diamin titrálási módszer vagy spektrofotometria módszer nagy érzékenységgel rendelkezik, és meghatározhatja az alacsony maradék klór-tartalommal rendelkező vízmintákat. Ez alkalmas az összes rendelkezésre álló klór meghatározására, amely szerves anyagot tartalmaz. A két módszer mérési tartományai 0,05-1,5 mg/L és 0,03-5 mg/L.